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    單克隆抗體技術(shù)概念、原理、基本方法和操作流程

    發(fā)布時間: 2010-11-03  點擊次數(shù): 5138次

    骨髓瘤細胞及飼養(yǎng)細胞的制備
      選擇瘤細胞株的zui重要的一點是與待融合的B細胞同源。如待融合的是脾細胞,各種骨髓瘤細胞株均可應(yīng)用,但應(yīng)用zui多的是Sp2/0細胞株。該細胞株生長及融合效率均佳,此外,該細胞株本身不分泌任何免疫球蛋白重鏈或輕鏈。細胞的zui高生長刻度為9×105/ml,倍增時間通常為10~15h。融合細胞應(yīng)選擇處于對數(shù)生長期、細胞形態(tài)和活性佳的細胞(活性應(yīng)大于95%)。骨髓瘤細胞株在融合前應(yīng)先用含8-氮鳥嘌呤的培養(yǎng)基作適應(yīng)培養(yǎng),在細胞融合的前一天用新鮮培養(yǎng)基調(diào)細胞濃度為2105/ml,次日一般即為對數(shù)生長期細胞。
      在體外培養(yǎng)條件下,細胞的生長依賴適當?shù)募毎芏?,因而,在培養(yǎng)融合細胞或細胞克隆化培養(yǎng)時,還需加入其他飼養(yǎng)細胞(feedercell)。常用的飼養(yǎng)細胞為小鼠的腹腔細胞,制備方法為用冷凍果糖液注入小鼠腹腔,輕揉腹部數(shù)次,吸出后的液體中即含小鼠腹腔細胞,其中在巨噬細胞和其他細胞。亦有用小鼠的脾細胞、大鼠或豚鼠的腹腔細胞作為飼養(yǎng)細胞的。
      在制備飼養(yǎng)細胞時,切忌針頭刺破動物的消化器官,否則所獲細胞會有嚴重污染。飼養(yǎng)細胞調(diào)至1×105/ml,提前一天或當天置板孔中培養(yǎng)。
      細胞融合
      細胞融合是雜交瘤技術(shù)的中心環(huán)節(jié),基本步驟是將兩種細胞混合后加入PEG使細胞彼此融合。其后吧培養(yǎng)液稀釋PEG,消除PEG的作用。將融合后的細胞適當稀釋,分置培養(yǎng)板孔中培養(yǎng)。融合過程中有幾個問題應(yīng)特別注意。①細胞比例:骨髓瘤細胞與脾細胞的比值可從1:2到1:10不等,常用1:4的比例。應(yīng)保證兩種細胞在融合前都具有較高活性。②反應(yīng)時間:在兩種細胞的混合細胞懸液中,第1min滴加4.5ml培養(yǎng)液;間隔2min滴加5ml培養(yǎng)液,爾后加培養(yǎng)液50ml。③培養(yǎng)液的成分:對融合細胞,良好的培養(yǎng)液尤其重要,其中的小牛血清、各種離子和營養(yǎng)成分均需嚴格配制。如融合效率降低,應(yīng)隨時核查培養(yǎng)基情況。
      有限稀釋法
      篩選陽性株一般選用的骨髓瘤細胞為HAT敏感細胞株,所以只有融合的細胞才能待續(xù)存活一周以上。融合細胞呈克隆生長,經(jīng)有限稀釋后(一般稀釋至0.8個細胞/ 孔),按Poisson法計算,應(yīng)有36%的孔為1個細胞/孔。細胞培養(yǎng)至覆蓋0%~20%孔底時,吸取培養(yǎng)上清用ELISA檢測抗體含量。首先依抗體的分泌情況篩選出高抗體分泌孔,將孔中細胞再行克隆化,爾后進行抗原特異的ELISA測定,選高分泌特異性細胞株擴大培養(yǎng)或凍存。
      單克隆抗體的制備和凍存
      篩選出的陽性細胞株應(yīng)及早進行抗體制備,因為融合細胞隨培養(yǎng)時間延長,發(fā)生污染、染包體丟失和細胞死亡的機率增加??贵w制備有兩種方法。一是增量培養(yǎng)法,即將雜交瘤細胞在體外培養(yǎng),在培養(yǎng)液中分離單克隆抗體。該法需用特殊的儀器設(shè)備,一般應(yīng)用無血清培養(yǎng)基,以利于單克隆抗體的濃縮和純化。zui普遍采用的是小鼠腹腔接種法。選用BALB/c 小鼠或其親代小鼠,先用降植烷或液體石蠟行小鼠腹腔注射,一周后將雜交瘤細胞接種到小鼠腹腔中去。通常在接種一周后即有明顯的腹水產(chǎn)生,每只小鼠可收集 5~10ml的腹水,有時甚至超過40ml。該法制備的腹水抗體含量高,每毫升可達數(shù)毫克甚至數(shù)十毫克水平。此外,腹水中的雜蛋白也較少,便于抗體的純化。接種細胞的數(shù)量應(yīng)適當,一般為5×105/鼠,可根據(jù)腹水生長情況適當增減。
      選出的陽性細胞株應(yīng)及早凍存。凍存的溫度越低越好,凍存于液氮的細胞株活性僅有輕微的降低,而凍存在-70℃冰箱則活性改變較快。細胞不同于菌種,凍存過程中需格外小心。二甲亞砜(DMSO)是普遍應(yīng)用的凍存保護劑。凍存細胞復蘇后的活性多在50%~95%之間。如果低于50%,則說明凍存復蘇過程有問題。
      單克隆抗體的純化
    單克隆抗體的純化方法同多克隆抗體的純化,腹水特異性抗體的濃度較抗血清中的多克隆抗體高,純化效果好。按所要求的純度不同采用相應(yīng)的純化方法。一般采用鹽析、凝膠過濾和離子交換層析等步驟達到純化目的,也有采用較簡單的酸沉淀方法。目前zui有效的單克隆抗體純化方法為親和純化法,多用葡萄球菌A 蛋白或抗小鼠球蛋白抗體與載體(zui常用Sepharose)交聯(lián),制備親和層析柱將抗體結(jié)合后洗脫,回收率可達90%以上。蛋白可與IgG1、 IgG2a、IgG2b和IgG3結(jié)合,同時還結(jié)合少量的IgM。洗脫液中的抗體濃度可用紫外光吸收法粗測,小鼠IgG單克隆抗體溶液在A280nm 時,1.44(吸光單位)相當于1mg/ml。經(jīng)低pH洗脫后在收集管內(nèi)預置中和液或速加中和液對保持純化抗體的活性至關(guān)重要。
     
     

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